相关介绍:
Ni-NTA琼脂糖凝胶FF以琼脂糖微球为基质,通过活化偶联次氮基三乙酸(NTA),再螯合Ni2+。与亚氨基二乙酸(IDA)相比,具有更好的螯合剂、还原剂、碱性的耐受性,如样品中含有1-10mM EDTA或1-10mM β-巯基乙醇或5mM DTT,可正常纯化;在螯合镍的情况下,也可以用0.1M NaOH清洗。
Ni-NTA琼脂糖凝胶FF主要用于纯化带组氨酸标签(His-Tag)的重组蛋白。纯化原理是利用重组蛋白组氨酸标签的咪唑环可与过渡金属Ni2+形成稳定的配位键,因此能特异、牢固、可逆地吸附于固定这些金属离子的基质,结合了His-Tag重组蛋白的Ni-NTA琼脂糖凝胶FF一般通过增加咪唑浓度进行竞争洗脱。
技术指标:
基质
|
4%琼脂糖凝胶
|
配基
|
-N(CH2COOH)3
|
配基密度
|
≥15 μmol/ml
|
填料粒径
|
60~180 μm
|
最大流速
|
800 cm/h
|
推荐流速
|
50-100 cm/h
|
pH稳定性
|
pH 5-12,pH 3~13
|
耐反压
|
0.3 MPa
|
载量
|
≥20 mg His-tag重组蛋白/ml
|
使用方法:
1、色谱柱装填
(1)所有需要用到的材料的温度要与色谱操作的温度一样,液体最好做脱气处理。
(2)在柱子下端加入蒸馏水,以除去柱子中的空气,关闭柱子出口,在柱内保留少量的蒸馏水。
(3)将琼脂糖凝胶连续倒入柱子时,要用玻璃棒的紧靠柱子内壁引流,以减少气泡的产生,让填料先自然沉降。
(4)柱压不超过0.3MPa,如果装柱系统中无法测柱压,则正常流速下填装。
(5)填装好的Ni-NTA琼脂糖凝胶FF柱用2-5个柱体积的初始缓冲溶液平衡,建议流速100cm/h,平衡后的柱子可以用于His-Tag重组蛋白的上样和洗脱纯化。
2、上样
(1)缓冲液选择:一般选用pH6-8的结合缓冲液,常用缓冲液有10-00mM 磷酸钠缓冲液、20-200mM Tris-HCl缓冲液等。在缓冲液中一般要加入0.15-0.5M的NaCl,以消除离子交换作用。在初次使用Ni-NTA琼脂糖凝胶FF,推荐使用50mM PBS(50 mM NaH2PO4,0.5M NaCl,NaOH调节pH 7.4)作为结合缓冲液。
(2)样品处理:样品的缓冲液应与所选结合缓冲液一致。为保证缓冲液一致,可以在结合缓冲液中破碎细菌、或调解pH与结合缓冲液一致、或交换至结合缓冲液(常用方法有透析、超滤、脱盐柱换液等)、或用结合缓冲液稀释2-10倍等。样品上柱前应0.45μm过滤。
3、洗脱
(1)Ni-NTA琼脂糖凝胶FF最常用的洗脱方法为增加咪唑浓度进行洗脱。
(2)咪唑为碱性,相应缓冲液配制后需要用HCl进行调节pH。
(3)在初次使用Ni-NTA琼脂糖凝胶FF,不知道洗脱的咪唑浓度,建议在结合缓冲液中分别加入10mM、20mM、50mM、100mM、200mM、500mM咪唑,浓度从低到高,分别洗脱和收集,通过SDS-PAGE电泳等方法鉴定洗脱组份。
(4)有条件的也可以进行线性咪唑梯度洗脱,确定较佳洗脱条件。
4、在位清洗
在多次使用后需要在位清洗,常用方法为先5个柱体积蒸馏水清洗,再用1-3个柱体积50mM NaOH清洗10-20min,立即用5个柱体积结合缓冲液(50mM PBS)清洗平衡。